Trizol，氯仿，异丙醇，75%乙醇（用RNase-Free水配制），RNase-Free水。
1ml注射器，1.5ml EP管（DEPC处理过），大、中、小号枪头（DEPC处理）
1.样品处理：（1）培养细胞：收获细胞1~5×107，加入1ml Trizol（异硫氰酸胍/酚）（在冰箱旁边取出白细胞即刻加入Trizol），混匀；用1ml注射器反复抽取（约30次）以破裂细胞及剪切DNA，室温静置5min（使核酸蛋白复合物完全分离）。（2）组织：取50~100mg组织（新鲜或-70℃及液氮中保存的组织均可）置1.5ml EP管中，加入1ml Trizol充分匀浆，室温静置5min。
2.可选步骤：如样品中含有较多蛋白质，脂肪，多糖或胞外物质（肌肉，植物结节部分等）可于2-8℃10000×g离心10分钟，取上清。离心得到的沉淀中包括细胞外膜，多糖，高分子量DNA，上清中含有RNA。处理脂肪组织时，上层有大量油脂应去除。取澄清的匀浆液进行下一步操作。
3.加入0.2ml氯仿，剧烈振荡15~30s，静置2~3min。４．4℃离心，12000g×15min。样品分为三层：底层为黄色有机相，上层为无色水相和一个中间层。RNA主要在水相中，水相体积约为所用TRIzol试剂的60℅。
5.小心吸取上清至一新的DEPC处理过的1.5ml EP管中（如要分离DNA和蛋白质可保留有机相），加入0.5ml异丙醇，将管中液体轻轻混匀，－８０℃静置２０min。6.4℃离心，12000g×10min。离心前看不出RNA沉淀，离心后在管侧和管底出现胶状沉淀。
7.弃上清，于沉淀中加入75%乙醇（冰冷）1ml，振摇，充分洗涤沉淀。8.4℃离心，12000g×5min。9.弃上清，短暂离心，小心吸取弃去上清。10.加入适量（20μl）DEPC （Rnase Free）H20溶解RNA（65℃促溶10~15min）。11.取2μl进行电泳，其余-80℃保存。
1.杜绝外源酶的污染。 （1）严格戴好口罩，手套。 （2）实验所涉及的离心管，Tip头，移液器杆，电泳槽，实验台面等要彻底处理。 （3）实验所涉及的试剂/溶液，尤其是水，必须确保RNase-Free。 2.阻止内源酶的活性。 （1）选择合适的匀浆方法。 （2）选择合适的裂解液。 （3）控制好样品的起始量。
3.明确自己的提取目的。 （1）任何裂解液系统在接近样品最大起始量时，提取成功率急剧下降。 （2）RNA提取成功的唯一经济的标准是后续实验的一次成功，而不是得率。 Rnase污染的10大来源 1.手指头 2.枪头 3.水/缓冲液 4.实验台面 5.内源Rnase 6.RNA样品 7.质粒提取 8.RNA保存 9.阳离子（Ca，Mg） 10.后续实验所用的酶