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高纯总RNA提取方法及步骤

改进的异硫氰酸胍/酚一步法(TRIzol法)裂解细胞和灭活RNA 酶, 然后总RNA在高离序盐状态下选择性吸附于离心柱内硅基质膜, 再通过一系列快速的漂洗-离心的步骤, 去蛋白液和漂洗液将细胞代谢物、蛋白等杂质去除, 最后低盐的RNase free water将纯净RNA从硅基质膜上洗脱。
工具/原料
1

RNApure高纯总RNA快速提取试剂盒1个

2

离心机

3

氯仿

方法/步骤
1

昊提示:第一次使用前请先在漂洗液RW瓶中加入指定量无水乙醇!鑫匀浆处理生a.   组织物将组织在液氮中磨碎,每50~100mg组织加1ml的裂解液RL后匀浆。组织样品容积不能超过RL容积的10%。b.   单层生长的细胞直接往直径3.5 cm的培养板中加入1ml的RL溶解细胞,并用移液枪轻轻吹打混匀。依据培养板的面积而不是依据细胞的数量来决定所需的RL量(每250px2加1ml)。一般情况下,普通大小的细胞培养瓶,加入1ml的RL, 迅速轻摇使RL充分和瓶底所有细胞接触裂解细胞并灭活RNA酶,轻轻用移液枪反复吹打混匀。当RL量不足时可导致抽提的RNA中污染有DNA。c.   悬浮生长的细胞通过离心来沉淀细胞,小心弃上清。每5~10×106的动物细胞,植物细胞加1ml的RL。在RL试剂中用移液枪反复吹打来裂解细胞。在加入RL前应避免洗涤细胞,否则会增加mRNA降解的可能性。

2

将匀浆样品剧烈震荡混匀,在15 -30°C条件下孵育5分钟以使核蛋白体完全分解。

3

可选步骤:4°C的条件下12,000rpm 离心10分钟,小心取上清转入一个新的RNase free的离心管中。当样品富含蛋白质、脂肪、多糖或是细胞外物质例如肌肉、脂肪组织或植物的块茎部分时可能需要一额外的分离步骤。匀浆化后在2~8°C的条件下以12,000rpm离心10分钟,移除匀浆中不溶解的物质,余下的沉淀中包含有细胞外膜、多糖、以及高分子量DNA,而上层的超浮游物含有RNA。

4

每1ml RL加0.2ml氯仿。盖紧样品管盖,剧烈振荡15秒并将其在室温下孵育3分钟。

5

于4℃12,000rpm 离心10分钟,样品会分成三层:下层有机相,中间层和上层无色的水相,RNA存在于水相中。水相层的容量大约为所加RL体积的50%,把水相小心转移到新管中(不要触碰中间层),记录水相体积。

6

加入水相体积一半也就是0.5倍体积的无水乙醇,混匀(此时可能会出现沉淀)。得到的溶液和可能沉淀一起转入吸附柱RA中(吸附柱套在收集管内,若一次不能将全部溶液和混合物加入吸附柱RA中,请分两次转入吸附柱RA中。) ,12,000rpm 离心45秒,弃废液,将吸附柱重新套回收集管。

7

加500μl去蛋白液RE,12,000 rpm离心45秒,弃废液。

8

加入500μl漂洗液RW(请先检查是否已加入无水乙醇!),12,000 rpm 离心45秒,弃废液。

9

重复步骤8一次。

10

将吸附柱RA放回空收集管中,13,000 rpm离心2分钟,尽量除去漂洗液, 以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。

11

取出吸附柱RA,放入一个RNase free离心管中,根据预期RNA产量在吸附膜的中间部位加50-80μl RNase free water,室温放置2分钟,12,000 rpm 离心1分钟。如果需要较多RNA,可将得到的溶液重新加入离心吸附柱中,离心1分钟,或者另外再加30μl RNase free water,离心1分钟,合并两次洗脱液。洗脱体积越大,洗脱效率越高,如果需要RNA浓度较高,可以适当减少洗脱体积, 但是最小体积最好不少于30μl,体积过小降低RNA洗脱效率,减少RNA产量。

注意事项
1

因此运输和储存均在室温下(15℃-25℃)进行。裂解液RL可以常温运输,收到后4℃避光可长期保存,常温保存3个月也不影响使用质量。

2

避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、PH值变化,各溶液使用后应及时盖紧盖子。

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