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新鲜活肿瘤组织冻存操作步骤

LiveTissue活肿瘤组织冻存试剂盒及配套产品可实现长期保存肿瘤组织,维持与新鲜肿瘤组织几乎相同的形态特征和功能。 活肿瘤组织用于建立PDX模型(人源性肿瘤动物模型),这种模型在肿瘤的研究和个体化诊疗有重要的意义。由于高度模拟患者肿瘤的生物特征,PDX模型被认为是最好的肿瘤研究模型,用于药物研发、测试和生物标志物鉴定。 理想的活肿瘤组织应当直接来源于患者,由于PDX模型鼠的建立操作程序复杂繁琐、运行成本高昂,并且新鲜肿瘤组织不能有效地冻存复苏,因此只有少量患者肿瘤组织能被利用。所以,通常使用已建系成功的PDX肿瘤,将它们传代或冻存(25%~65%)以便实现规模化扩增。但是,PDX肿瘤在传代过程中逐渐丧失异质性,失去应用价值;另一方面,常规组织冻存方法(含DMSO和血清)不成熟,难以高效利用这些肿瘤组织。LiveTissue产品可以实现高效地冻存、复苏新鲜肿瘤组织,从而有效利用丰富的肿瘤资源,提供了一种标准化冻存、复苏方法,方便大量冻存肿瘤组织。新鲜肿瘤组织冻存后,只需维护一个液氮保存的组织样本库即可。然后,根据科研或用户需求自由选择时间建立PDX模型;同时,将不必投入大量人力、物力用于维持PDX模型库的日常运转。 本产品除用于冻存肿瘤组织外,也可以冻存正常组织或组织工程生物产品。例如:动脉组织、软骨组织、角膜组织、胰腺组织、组织工程皮肤等。
工具/原料
1

活肿瘤组织冻存试剂盒(LT2601) 组织冻存管 X3 组织支架 X3 组织冻存液: No.1 玻璃化液 1(V1) …………. 1X10ml 管 No.2 玻璃化液 2(V2) ............... . 1X10ml 管

2

1. 生理盐水/1XPBS 2. 眼科剪 3. 眼科镊 4. 有齿镊 5. 平口镊 6. 组织处理模具及配套刀片(LT2603) 7. 无菌液氮 8. 无菌液氮盒 9. 秒表或计时器 10. 100mm 培养皿 X4 11. 无菌纱布 12. 水浴锅

方法/步骤
1

在组织冻存管上记录清楚肿瘤组织的相关信息;

2

水浴加热并维持玻璃化液 1、玻璃化液 2 为 26℃; 注意:在后续使用玻璃化液 1、玻璃化液 2 时,维持液温为 26℃,有利于提高组织复苏后 的存活率。

3

在 100mm 培养皿中,用生理盐水清洗肿瘤组织,使用眼科剪、眼科镊修剪 去除血管、包膜以及坏死组织;

4

使用组织处理模具将肿瘤组织切成 1mm 厚的薄片; 注意:经验证,组织切片的最佳厚度为 1mm。

5

在 100mm 培养皿中,用生理盐水再次清洗切好的组织,并用无菌纱布吸除 组织表面的液体;

6

使用平口镊将肿瘤组织切片浸入 V1 管中的 10ml 玻璃化液 1 中,26℃, 25min ;

7

将 V1 管中的液体及组织切片全部倒入 100mm 培养皿中,在移入 V2 管前使 用无菌纱布尽量将组织表面的玻璃化液 1 吸除; 注意:尽量减少组织切片从玻璃化液 1 移入玻璃化液 2 之间的操作时间。

8

使用平口镊将组织切片移入 V2 管中的 10ml 玻璃化液 2 中,26℃, 15min 或 者待组织切片自然沉降至管底; 注意:如果组织切片在 15min 内没有自然沉降至 V2 管的管底,等待至其沉至管底;如果组织切片早于 15min 沉至管底,让组织切片在 V2 管内浸泡至少 15min。

9

将组织切片平铺摆放于组织支架上;

10

将组织支架平放于无菌纱布上,尽量吸除组织切片表面的液体;

11

使用有齿镊将组织支架快速浸入无菌液氮,时间不少于 5min;

12

快速将组织支架移入组织冻存管内,旋紧冻存管,将冻存管移入液氮罐中保 存。 注意:在组织支架移入组织冻存管前,检查组织切片是否透明,透明的组织切片意味着组 织切片成功被玻璃化。

注意事项
1

在后续使用玻璃化液 1、玻璃化液 2 时,维持液温为 26℃,有利于提高组织复苏后 的存活率。

2

经验证,组织切片的最佳厚度为 1mm。

3

尽量减少组织切片从玻璃化液 1 移入玻璃化液 2 之间的操作时间。

4

如果组织切片在 15min 内没有自然沉降至 V2 管的管底,等待至其沉至管底;如果组织切片早于 15min 沉至管底,让组织切片在 V2 管内浸泡至少 15min。

5

在组织支架移入组织冻存管前,检查组织切片是否透明,透明的组织切片意味着组 织切片成功被玻璃化。

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