注射器，老鼠，EP管
溶血现象：红细胞破裂，使血红蛋白从细胞内逸出的现象。在体外，低渗溶液、机械性强力振荡、突然低温冷冻（-20℃～—25℃）或突然化冻、过酸或过碱，以及酒精、乙醚、皂碱、胆碱盐等均可引起溶血。所以所有的预防溶血现象的操作前提都是防止红细胞膜的破损，所谓温柔的对待你的实验，大概就是这么来的吧(●'◡'●)
取血的时候，需要“一针见血”！通常发生溶血的原因采血时定位或进针不准，针尖在血管内探来探去，引起血肿和血样溶血，或没有使用专用针头，而用注射器直接将血推到试管时用力过猛或运输动作过大。还可能是因为从一根已有血肿的静脉采血，血样中已含有溶血的细胞；相对于试管中的集添加剂采血量不足，由于渗透压的改变发生溶血；静脉穿刺时，为增加血流而挤压穿刺部位。当然像是眼球取血这种，摘了一下眼球，发现血不多，就用镊子再戳戳这种，还是尽量避免吧。
准备存放血样的EP管，可以事先用生理盐水进行浸润，这样可以减少血样刚刚接触EP管带来的红细胞破损。生理盐水为等渗溶液，pH=7。注射器也是同理。当然注射器EP管的质量过关之类就没必要说了吧。
采集血标本时，试管倾斜约30度，使针头斜面靠近试管壁，避免血液直接射向管底，减轻血液的直接振荡。有时候加入抗凝剂后，需要混匀，原则上也是温柔的混匀。 不要产生气泡！
血样的保存，禁制骤冷！不要直接丢-20℃-80℃之类的。
取血要快。有的时候，你上一部分的血都在注射器里面凝固了，你的血还没取完呢。注射器里面凝固的血就具备了伤害你正常细胞的能力，就不多说了，唉。
关于“小鼠眼球取血方法”上说的，使用手术剪剪去小鼠的胡须，防止血从胡须处留下引起溶血。(这个不是太明白原理，有懂得可以私信我)取血时注意不要造成动物中途死亡，使采血不完全，还可能引起溶血现象发生，影响实验结果。
取血需要温柔中带着稳准狠
断头取血的阴影还笼罩着我(哭)